概要：1.2.2 外植体的生长与分化 取匍匐茎顶梢剪去叶片，在自来水下冲洗干净，取出已长出的小叶。在超净工作台上，用70％酒精杀菌30s，用无菌水冲洗3次（3min/次），再用0.1%升汞泡7~8min，用无菌水冲洗3~5次（5~10min/次）。用无菌尖头镊子将匍匐茎茎尖外面的包叶剥去，用镊子将幼叶一一剥去，切取尽可能小的茎尖（0.1~0.3mm），置于分化培养基中（MS培养基，附加BA 0.5mg·L-1，蔗糖30g，琼脂5g）于光照度3000 lx，光周期8~10h，温度20~28℃条件下培养20d左右［1］。 1.2.3 试管苗的生根 取40mlMS生根培养基（1/2MS+IBA0.5mg·L-1+蔗糖20g+琼脂5g）置于100ml三角瓶中，每瓶接种4株长势基本相同的试管苗，于光照4000 lx，光周期14h，温度20~27℃条件下培养约30d［2］。 参考文献 [1] 牛建新，鲁晓燕，于艳华．外植体和培养因子对草莓不定芽诱导的影响［J］．北方园艺，1999，3：30～31． [
植物专业毕业实习报告,标签：会计实习报告,金工实习总结报告,http://www.laixuea.com1.2.2 外植体的生长与分化
取匍匐茎顶梢剪去叶片，在自来水下冲洗干净，取出已长出的小叶。在超净工作台上，用70％酒精杀菌30s，用无菌水冲洗3次（3min/次），再用0.1%升汞泡7~8min，用无菌水冲洗3~5次（5~10min/次）。用无菌尖头镊子将匍匐茎茎尖外面的包叶剥去，用镊子将幼叶一一剥去，切取尽可能小的茎尖（0.1~0.3mm），置于分化培养基中（MS培养基，附加BA 0.5mg·L-1，蔗糖30g，琼脂5g）于光照度3000 lx，光周期8~10h，温度20~28℃条件下培养20d左右［1］。
1.2.3 试管苗的生根
取40mlMS生根培养基（1/2MS+IBA0.5mg·L-1+蔗糖20g+琼脂5g）置于100ml三角瓶中，每瓶接种4株长势基本相同的试管苗，于光照4000 lx，光周期14h，温度20~27℃条件下培养约30d［2］。
参 考 文 献
[1] 牛建新，鲁晓燕，于艳华．外植体和培养因子对草莓不定芽诱导的影响［J］．北方园艺，1999，3：30～31．
[2] 甄文超，曹克强，代 丽，等．连作草莓根系分泌物自毒作用的模拟研究［J］．植物生态学报，20xx，28(6)：828～832．
[3] 李 云 主编，林果花菜组织培养快速育苗技术［M］．中国林业出版社．20xx．6．
[4] 沈德绪．果树育种学［M］．上海：上海科学技术出版社，1980．
附录1—草莓组织培养MS培养基配方［4］
Formula of MS culture medium used in strawberry tissue culture
母液 Solution | 成分 Composition | 浓度（mg/L） Concentration | 母液 Solution | 成分 Composition | 浓度（mg/L） Concentration |
Ⅰ | KNO3 | 1900 | Ⅳ | Na2EDTA | 37.3 |
MgSO4·7H2O | 370 | FeSO4·7H2O | 27.8 | ||
NH4NO3 | 1650 | Ⅴ | VB1 | 0.1 | |
KH2PO4 | 170 | VB6 | 0.5 | ||
Ⅱ | MnSO4·H2O | 16.9 | 烟酸 | 0.5 | |
ZnSO4·7H20 | 8.6 | 肌醇 | 100 | ||
H3BO3 | 6.2 | 甘氨酸 | 2 | ||
KI | 0.83 | Ⅵ | Cacl2·2H2O | 440 | |
Ⅲ | Na2MoO4·2H2O | 0.25 | |||
CuSO4·5H2O | 0.025 | Ⅶ | BA | 0.1～0.3 | |
CocL2 ·6H2O | 0.025 | ||||
Ⅷ | IBA | 0.2～0.7 |